Compuestos fenólicos y capacidad antirradicalaria de cinco accesiones silvestres de Portulaca oleracea L.
DOI:
https://doi.org/10.29312/remexca.v12i6.2729Palabras clave:
antioxidantes, planta comestible, variación fitoquímicosResumen
La verdolaga (Portulaca oleracea L.) es una especie reconocida por sus altos niveles de compuestos bioactivos, entre los que destacan los compuestos antioxidantes y su capacidad colectora de radicales libres. El objetivo del trabajo fue determinar la variación de metabolitos fenólicos y sus capacidades antirradicalarias en accesiones silvestres de P. oleracea. La investigación se realizó con muestras provenientes de cinco municipios de Tamaulipas, México recolectadas en octubre 2018. Se determinaron los contenidos de compuestos fenólicos totales (CFT) y capacidad colectora de radicales libres contra ABTS (ácido 2,2'-azino-bis- (3-etilbenzotiazolina-6-sulfónico)) y DPPH (2,2-difenil-1-picrilhidracilo). Las extracciones se realizaron de partes vegetativas usando tres solventes: acetona, agua y etanol. La accesión de las localidades de Abasolo y Padilla fueron la que presentaron mayor cantidad de CFT con 5.8938±0.03 y 5.3742±0.11 mEAG/g PS, respectivamente, usando agua en la extracción y la accesión de Padilla fue la de menor contenido con 1.2409±0.45 mEAG/g PS usando etanol para la extracción. Respecto a la capacidad colectora de radicales libres contra ABTS y DPPH la accesión de Abasolo registró los valores más altos, con 3.2700±0.06 y 2.0204±0.05 mM ET/g PS, respectivamente, usando agua en la extracción. El agua fue el mejor solvente para la extracción de todos los contenidos determinados. Se observó una heterogeneidad en la composición y niveles de los parámetros evaluados entre las accesiones. Las accesiones silvestres de P. oleracea representan reservorios importantes de compuestos fenólicos y capacidad colectora de radicales libres, los cuales deben caracterizarse a fondo para apoyar el aprovechamiento de la especie, incluyendo las variedades cultivadas y silvestres.
Descargas
Citas
Alam, M.; Juraimi, A. S.; Rafii, M. Y.; Abdul, A.; Aslani, F.; Hasan, M. M.; Zainudin, M. A. and Uddin, M. 2014. Evaluation of antioxidant compounds, antioxidant activities, and mineral composition of 13 collected purslane (Portulaca oleracea L.) accessions. BioMed Res. Int. 2014(1):1-6. https://doi.org/10.1155/2014/951019. DOI: https://doi.org/10.1155/2014/296063
Allahmoradi, E.; Taghiloo, S.; Omrani-Nava, V.; Shobeiri, S. S.; Tehrani, M.; Ebrahimzadeh, M. A. and Asgarian-Omran, H. 2018. Antiinflammatory effects of the Portulaca oleracea hydroalcholic extract on human peripheral blood mononuclear cells. Med. J. Islam Repub. Iran. 32(1):1-6.
Almulaiky, Y. Q.; Aldhahri, M.; Al-abbasi, F. A.; Al-Harbi, S. A. and Shiboob, M. H. 2020. In Vitro Assessment of Antioxidant Enzymes, Phenolic Contents and Antioxidant Capacity of the Verdolaga (Portulacaceae). Int. J. Nutr. 4(4):36-47. https://doi.org/10.14302/ issn.2379-7835.ijn-19-3144.
Alu’datt, M. H.; Rababah, T.; Alhamad, M. N.; Al-Tawaha, A.; Al-Tawaha, A. R.; Gammoh, S.; Ereifeja, K. I.; Al-Karakic, G.; Hamashae, F.; Tranchantg, C. C. and Kubow, S. 2019. Herbal yield, nutritive composition, phenolic contents and antioxidant activity of purslane (Portulaca oleracea L.) grown in different soilless media in a closed system. Ind. Crop Prod. 141:11746. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2019.111746.
Araghi, A. M.; Nemati, H.; Azizi, M.; Moshtaghi, N.; Shoor, M. and Hadian, J. 2019. Assessment of phytochemical and agro-morphological variability among different wild accessions of Mentha longifolia L. cultivated in field condition. Ind. Crop. Prod. 140:111698. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2019.111698.
Assefa, A. D.; Keum, Y. S. and Saini, R. K. 2018. A comprehensive study of polyphenols contents and antioxidant potential of 39 widely used spices and food condiments. J. Food Meas. Charact. 12(3):1548-1555. https://doi.org/10.1007/s11694-018-9770-z. DOI: https://doi.org/10.1007/s11694-018-9770-z
Bartolini, S.; Leccese, A.; Remorini, D.; Iacona, C. and Viti, R. 2018. Quality and antioxidant traits of organic apricots (Prunus armeniaca L.) at harvest and after storage. Eur. J. Hortic. Sci. 83(1):12-17. https://doi.org/10.17660/eJHS.2018/83.1.2. DOI: https://doi.org/10.17660/eJHS.2018/83.1.2
Bautista, I.; Boscaiu, M.; Lidón, A.; Llinares, J. V.; Lull, C.; Donat, M. P.; Mayoral, O. and Vicente, O. 2016. Environmentally induced changes in antioxidant phenolic compounds levels in wild plants. Acta Physiol. Plant. 38(1):1-15. https://doi.org/10.1007/s11738-015-2025-2. DOI: https://doi.org/10.1007/s11738-015-2025-2
Brand-Williams, W.; Cuvelier, M. E. and Berset, C. L. W. T. 1995. Use of a free radical method to evaluate antioxidant activity. LWT - Food Sci. Technol. 28(1):25-30. https://doi.org/ 10.1016/ S0023-6438(95)80008-5. DOI: https://doi.org/10.1016/S0023-6438(95)80008-5
Capecka, E.; Mareczek, A. and Leja, M. 2005. Antioxidant activity of fresh and dry herbs of some Lamiaceae species. Food Chem. 93(2):223-226. https://doi.org/10.1016/j.foodchem. 2004.09.020. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2004.09.020
Caverzan, A.; Casassola, A. and Brammer, S. P. 2016. Antioxidant responses of wheat plants under stress. Genet. Mol. Biol. 39(1):1-6. https://doi.org/10.1590/1678-4685-GMB-2015-0109. DOI: https://doi.org/10.1590/1678-4685-GMB-2015-0109
Chan, C. L.; Gan, R. Y. and Corke, H. 2016. The phenolic composition and antioxidant capacity of soluble and bound extracts in selected dietary spices and medicinal herbs. Int. J. Food Sci. Tech. 51(3):565-573. https://doi.org/10.1111/ijfs.13024. DOI: https://doi.org/10.1111/ijfs.13024
Cobaleda-Velasco, M.; Alanis-Bañuelos, R. E.; Almaraz-Abarca, N.; Rojas-López, M.; González-Valdez, L. S.; Ávila-Reyes J. A. and Rodrigo S. 2017. Phenolic profiles and antioxidant properties of Physalis angulata L. as quality indicators. J. Pharm. Pharmacogn. Res. 5(2):114-128.
Felhi, S.; Daoud, A.; Hajlaoui, H.; Mnafgui, K.; Gharsallah, N. and Kadri, A. 2017. Solvent extraction effects on phytochemical constituents profiles, antioxidant and antimicrobial activities and functional group analysis of Ecballium elaterium seeds and peels fruits. Food Sci. Technol. 37(3):483-492. http://dx.doi.org/10.1590/1678-457x.23516. DOI: https://doi.org/10.1590/1678-457x.23516
Frontela, C.; Canali, R. y Virgili, F. 2010. Empleo de compuestos fenólicos en la dieta para modular la respuesta inflamatoria intestinal. Gastroenterol Hepatol. 33(4):307-312. https://doi.org/10.1016/j.gastrohep.2009.09.006. DOI: https://doi.org/10.1016/j.gastrohep.2009.09.006
Gallo, M.; Conte, E. and Naviglio, D. 2017. Analysis and comparison of the antioxidant component of Portulaca oleracea leaves obtained by different solid-liquid extraction techniques. Antioxidants. 6(3):64. https://doi.org/10.3390/antiox6030064. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox6030064
García, E. 2004. Modificaciones al sistema de clasificación climática de Köppen. 5a. (Ed.). Instituto de Geografía-Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM). DF, México. 92 p.
Gatea, F.; Teodor, E. D.; Seciu, A. M.; Nagodă, E. and Radu, G. L. 2017. Chemical constituents and bioactive potential of Portulaca pilosa L vs. Portulaca oleracea L. Med. Chem. Res. 26(7):1516-1527. https://doi.org/10.1007/s00044-017-1862-5. DOI: https://doi.org/10.1007/s00044-017-1862-5
Gharibi, S.; Tabatabaei, B. E. S.; Saeidi, G. and Goli, S. A. H. 2016. Effect of drought stress on total phenolic, lipid peroxidation, and antioxidant activity of Achillea species. Appl. Biochem. Biotechnol. 178(4):796-809. https://doi.org/10.1007/s12010-015-1909-3. DOI: https://doi.org/10.1007/s12010-015-1909-3
Gutiérrez, Á.; Ledesma, L.; García, I. y Grajales, O. 2007. Capacidad antioxidante total en alimentos convencionales y regionales de Chiapas, México. Rev. Cub. Salud Pública. 33(1):1-7. DOI: https://doi.org/10.1590/S0864-34662007000100008
Habibian, M.; Sadeghi, G. and Karimi, A. 2020. Phytochemicals and Antioxidant Properties of Solvent Extracts from Purslane (Portulaca oleracea L.): a preliminary study. Food Sci. Eng. 1(1):1-12. https://doi.org/10.37256/fse.11202046.
Hammer, O.; Harper, D. A. T. and Ryan, P. D. 2001. PAST: paleontological statistics software package for education and data analysis. Paleontol. Electron. 4(1):1-9.
Kaur, D.; Grewal, S. K.; Kaur, J. and Singh, S. 2017. Free radical scavenging activities can mitigate the effect of water stress in chickpea. Crop Pasture Sci. 68(6):544-554. https://doi.org/10.1071/CP17022. DOI: https://doi.org/10.1071/CP17022
Khodadadi, H.; Pakdel, R.; Khazaei, M.; Niazmand, S.; Bavarsad, K. and Hadjzadeh, M. 2018. A comparison of the effects of Portulaca oleracea seeds hydro-alcoholic extract and Vitamin C on biochemical, hemodynamic and functional parameters in cardiac tissue of rats with subclinical hyperthyroidism. Avicenna J. Phytomed. 8(2):161-169.
Mocan, A.; Zengin, G.; Simirgiotis, M.; Schafberg, M.; Mollica, A.; Vodnar, D. C.; Crişan, G. and Rohn, S. 2017. Functional constituents of wild and cultivated Goji (L. barbarum L.) leaves: phytochemical characterization, biological profile, and computational studies. J. Enzyme Inhib. Med. Chem. 32(1):153-168. https://doi.org/10.1080/14756366.2016.1243535. DOI: https://doi.org/10.1080/14756366.2016.1243535
Nemzer, B.; Al-Taher, F. and Abshiru, N. 2020. Phytochemical composition and nutritional value of different plant parts in two cultivated and wild purslane (Portulaca oleracea L.) genotypes. Food Chem. 320(1):126621. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2020. 126621.
Ninfali, P.; Mea, G.; Giorgini, S.; Rocchi, M. and Bacchiocca, M. 2005. Antioxidant capacity of vegetables, spices and dressings relevant to nutrition. Br. J. Nutr. 93(2):257-266. https://doi.org/10.1079/BJN20041327. DOI: https://doi.org/10.1079/BJN20041327
Oliveira, I.; Valentao, P.; Lopes, R.; Andrade, P. B.; Bento, A. and Pereira, J. A. 2009. Phytochemical characterization and radical scanvenging activity of Portulaca oleracea L. leaves and Stems. Microchem. 92(2):129-134. https://doi.org/10.1016/j.microc.2009. 02.006. DOI: https://doi.org/10.1016/j.microc.2009.02.006
Qasim, M.; Abideen, Z.; Adnan, M. Y.; Gulzar, S.; Gul, B.; Rasheed, M. and Khan, M. A. 2017. Antioxidant properties, phenolic composition, bioactive compounds and nutritive value of medicinal halophytes commonly used as herbal teas. S. African J. Bot. 110(1):240-250. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2016.10.005. DOI: https://doi.org/10.1016/j.sajb.2016.10.005
Ramadan, B. K.; Schaalan, M. F. and Tolba, A. M. 2017. Hypoglycemic and pancreatic protective effects of Portulaca oleracea extract in alloxan induced diabetic rats. BMC Complement. Altern. Med. 17(1):37. https://doi.org/10.1186/s12906-016-1530-1. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-016-1530-1
Re, R.; Pellegrini, N.; Proteggente, A.; Pannala, A.; Yang, M. and Rice-Evans, C. 1999. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radic. Biol. Med. 26(9-10):1231-1237. https://doi.org/10.1016/S0891-5849(98)00315-3. DOI: https://doi.org/10.1016/S0891-5849(98)00315-3
Román, N. R.; Del Rosario, M.; Castillo, A. M.; Sahagún, J. y Jiménez, M. A. 2018. Características nutricionales y nutracéuticas de hortalizas de uso ancestral en México. Rev. Fitotec. Mex. 41(3):245-253. https://doi.org/10.35196/rfm.2018.3.245-253.
Santiago-Saenz, Y. O.; Hernández-Fuentes, A. D.; Monroy-Torres, R.; Cariño-Cortés, R. and Jiménez-Alvarado, R. 2018. Physicochemical, nutritional and antioxidant characterization of three vegetables (Amaranthus hybridus L., Chenopodium berlandieri L., Portulaca oleracea L.) as potential sources of phytochemicals and bioactive compounds. J. Food Meas. Charact. 12(4):2855-2864. https://doi.org/10.1007/s11694-018-9900-7.
Sauceda, A. E. Q.; Palafox, H.; Sánchez, R. M. R. y Aguilar, G. A. G. 2011. Interacción de compuestos fenólicos y fibra dietaria: capacidad antioxidante y biodisponibilidad. Biotecnia. 13(3):3-11. https://doi.org/10.18633/bt.v13i3.91. DOI: https://doi.org/10.18633/bt.v13i3.91
Sdouga, D.; Branca, F.; Kabtni, S.; Trifi-Farah, N. and Marghali, S. 2020. Polyphenol variability of Italian and Tunisian populations of Portulaca oleracea L. Acta Hortic. 1267(1):115-118. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2020.1267.18.
Sicari, V.; Loizzo, M. R.; Tundis, R.; Mincione, A. and Pellicano, T. M. 2018. Portulaca oleracea L. (Purslane) extracts display antioxidant and hypoglycaemic effects. J. Appl. Bot. Food Qual. 91(1):39-46. https://doi.org/10.5073/JABFQ.2018.091.006.
Singleton, V. L.; Orthofer, R. and Lamuela-Raventós, R. M. 1999. Analysis of total phenols and other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagent. Methods Enzymol. 299(1):152-178. Academic press. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1. DOI: https://doi.org/10.1016/S0076-6879(99)99017-1
Thouri, A.; Chahdoura, H.; El Arem, A.; Hichri, A. O.; Hassin, R. B. and Achour, L. 2017. Effect of solvents extraction on phytochemical components and biological activities of Tunisian date seeds (var. Korkobbi and Arechti). BMC Complement. Altern. Med. 17(1):248. https://doi.org/10.1186/s12906-017-1751-y. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-017-1751-y
Top, O.; Bar, C.; Ökmen, B.; Özer, D. Y.; Rusçuklu, D.; Tamer, N.; Frary, A. and Doğanlar, S. 2014. Exploration of three solanum species for improvement of antioxidant traits in tomato. HortScience. 49(8):1003-1009. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.49.8.1003.
Urbizu-González, A. L.; Castillo-Ruiz, O.; Martínez-Ávila, G. C. G. and Torres-Castillo, J. A. 2017. Natural variability of essential oil and antioxidants in the medicinal plant Turnera diffusa. Asian Pac. J. Trop. Med. 10(2):121-125. https://doi.org/10.1016/j.apjtm.2017. 01.013. DOI: https://doi.org/10.1016/j.apjtm.2017.01.013
Van Treuren, R.; Van Eekelen, H. D.; Wehrens, R. and de Vos, R. C. 2018. Metabolite variation in the lettuce gene pool: towards healthier crop varieties and food. Metabolomics. 14(11):146. https://doi.org/10.1007/s11306-018-1443-8.
Descargas
Publicado
Cómo citar
Número
Sección
Licencia
Derechos de autor 2021 Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas
Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0.
Los autores(as) que publiquen en Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas aceptan las siguientes condiciones:
De acuerdo con la legislación de derechos de autor, Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas reconoce y respeta el derecho moral de los autores(as), así como la titularidad del derecho patrimonial, el cual será cedido a la revista para su difusión en acceso abierto.
Los autores(as) deben de pagar una cuota por recepción de artículos antes de pasar por dictamen editorial. En caso de que la colaboración sea aceptada, el autor debe de parar la traducción de su texto al inglés.
Todos los textos publicados por Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas -sin excepción- se distribuyen amparados bajo la licencia Creative Commons 4.0 atribución-no comercial (CC BY-NC 4.0 internacional), que permite a terceros utilizar lo publicado siempre que mencionen la autoría del trabajo y a la primera publicación en esta revista.
Los autores/as pueden realizar otros acuerdos contractuales independientes y adicionales para la distribución no exclusiva de la versión del artículo publicado en Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas (por ejemplo incluirlo en un repositorio institucional o darlo a conocer en otros medios en papel o electrónicos) siempre que indique clara y explícitamente que el trabajo se publicó por primera vez en Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas.
Para todo lo anterior, los autores(as) deben remitir el formato de carta-cesión de la propiedad de los derechos de la primera publicación debidamente requisitado y firmado por los autores(as). Este formato debe ser remitido en archivo PDF al correo: revista_atm@yahoo.com.mx; revistaagricola@inifap.gob.mx.
Esta obra está bajo una licencia de Creative Commons Reconocimiento-No Comercial 4.0 Internacional.
