Contaminación microbiana en etapas de propagación in vitro de Agave angustifolia Haw.
DOI:
https://doi.org/10.29312/remexca.v17i2.4251Palabras clave:
antibióticos, contaminación microbiana, microorganismos, organogénesisResumen
Cuando los tejidos de tallo de Agave angustifolia se establecen in vitro ocurre frecuentemente contaminación microbiana, por lo que se evaluó el uso de antibióticos para resolver este problema. El objetivo de este trabajo fue determinar el porcentaje de tejidos de tallo que se establecen asépticos y con respuesta morfogenética en tres situaciones: 1) durante el establecimiento in vitro (etapa I); 2) en explantes que en la etapa I ocurrió organogénesis con formación de brotes, pero estaban contaminados con bacterias, y éstos se trataron con antibióticos para eliminar contaminación; y 3) en brotes adventicios asépticos obtenidos en etapa I y transferidos al medio de multiplicación de propágulos (etapa II). Se evaluaron los porcentajes de cultivos asépticos, tejidos viables y respuesta organogénica. Los resultados mostraron que solo entre 3.68 y 8.73% de los tejidos de tallo se lograron asépticos durante la etapa I. Pero, al aplicar antibióticos a brotes ya formados pero contaminados por bacterias en esta etapa, se recuperó la asepsia en 52.5% de los cultivos. Por otro lado, los brotes adventicios que fueron asépticos desde la etapa I y se trasladaron al medio de multiplicación (etapa II) mantuvieron la asepsia en un 89.88%, todos fueron viables y mostraron formación de nuevos brotes. Estos resultados indican que el tratamiento con antibióticos en tejidos de tallo ya inducidos es una estrategia efectiva para rescatar cultivos contaminados y que la transferencia de brotes asépticos a la etapa de multiplicación permite mantener cultivos asépticos con respuesta morfogenética.
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Referencias
Abreu, E.; Sosa-Castillo, M.; Ascunce-Sol G. y González, G. 2016. Efecto de antibióticos en la propagación in vitro de Agave fourcroydes Lem. Biotecnología Vegetal. 16(1):31-36. https://revista.ibp.co.cu/index.php/BV/article/view/507.
Altan, F.; Bürün, B. and Sahin, N. 2010. Fungal contaminants observed during micropropagation of Lilium candidum L. and the effect of chemotherapeutic substances applied after sterilization. African Journal of Biotechnology. 9(7):991-995.
Azofeifa, A. 2009. Problemas de oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados in vitro. Agronomía Mesoamericana. 20(1):153-175. https://archivo.revistas.ucr.ac.cr/index.php/agromeso/article/view/4990/4799.
Cruz-Hernández, H.; Enríquez-Valle, J. R.; Velasco-Velasco, V. A.; Ruiz-Luna, J.; Campos-Ángeles, G. V. y Aquino, D. E. 2013. Nutrimentos y carbohidratos en plantas de Agave angustifolia Haw. y Agave karwinskii Zucc. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas. 6(4):1161-1173. https://www.scielo.org.mx/pdf/remexca/v4nspe6/v4spe6a8.pdf.
Debergh, P. C. and Maene, L. J. 1981. A Scheme for commercial propagation of ornamental plants by tissue culture. Scientia Horticulturae. 14(4):335-345. https://doi.org/10.1016/0304-4238(81)90047-9.
DGSIAP. 2024. Dirección General del Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. Anuario estadístico de la producción agrícola. https://nube.agricultura.gob.mx/cierre-agricola/.
Domínguez-Rosales, M. S.; González-Jiménez, M. L.; Rosales-Gómez, C.; Quiñones-Valles, C.; Delgadillo, D. S.; Mireles-Ordaz, S. J. y Pérez-Molphe, B. E. 2008. El cultivo in vitro como herramienta para el aprovechamiento, mejoramiento y conservación de especies del género agave. Investigación y Ciencia. Universidad Autónoma de Aguascalientes. 41:53-62. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=6104556.
Enjalric, F.; Carron, M. P. and Lardet, L. 1988. Contamination of primary cultures in tropical areas: the case of Hevea brasiliensis. Acta Horticulturae. 225:57-66. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.1988.225.6.
Enríquez-Valle, J. R. 2008. La propagación y crecimiento de agaves. Fundación Produce Oaxaca, AC. Instituto Tecnológico del Valle de Oaxaca (ITVO). Oaxaca. México. ISBN: 978-607-00. 46 p.
Fortes, A. M. and Pais, M. S. 2000. Organogenesis from intemode-derived nodules of Humulus lupulus var. Nugget (Cannabinaceae): histoligical studies and changes in the starch content. American Journal of Botanic. 87(7):971-979. https://doi.org/10.2307/2656996.
George, E. F. and Debergh, P. C. 2008. Micropropagation: uses and methods. In: George, E. F.; Hall, M. and De Klerk, G. Plant propagation by tissue culture. 3er Ed. The Bacground. Springer. 29-64 pp.
González-González, L. R.; García-Pérez, M. I. B.; Gutiérrez, L. K. y García, A. 2007. Obtención de azúcares fermentables a partir de inulinasas inmovilizadas por el método del sol-gel. Rev. Cienc. Tecnol. 6(6):106-111.
Jarquín-Rosales, D.; Enríquez-Valle, J. R.; Alpuche-Osorno, J. J.; Rodríguez-Ortiz, G.; Martin, M. P. and Campos-Ángeles, G. V. 2022. The effects of fertirrigation and Azospirillum brasilense inoculation on photosynthetic compounds of Agave angustifolia. Australian Journal of Crop Science. 16:162-168. Doi: http://doi.org/10.21475/ajcs.22.16.01.p3280.
Leifert, C. and Cassells, A. C. 2001. Microbial hazards in plant tissue and cell cultures. In Vitro Cellular & Developmental Biology Plant. 37(2):133-138. https://doi.org/10.1007/s11627-001-0025-y.
Leifert, C. and Waites, W. M. 1992. Bacterial growth in plant tissue culture media. Journal of Applied Bacteriology. 72:460-466. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.1992.tb01859.x.
Leifert, C.; Ritchie, J. Y. and Waites, W. M. 1991. Contaminants of plant tissue cultures. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 37(2):133-138. https://doi.org/10.1007/BF00303371.
López-Acevedo, L.; Merino-Pérez, Y. E.; Enríquez-Valle J. R.; Rodríguez-Ortiz, G. and Lagunas-Sánchez, Z. C. 2018. Organogénesis in vitro en tejidos de tallo de Agave marmorata y Agave angustifolia. Revista Mexicana de Agroecosistemas. 5(2):20-27. https://revistaremaeitvo.mx/index.php/remae/article/view/165.
Miguel-Luna, M. E.; Enríquez-Valle, J. R.; Velasco-Velasco, V. A.; Villegas-Aparicio, Y.; Carrillo-Rodríguez, J. C. y Rodríguez-Ortíz, G. 2013. Composición del medio de cultivo y la incubación para enraizar brotes de Agave. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas. 4(6):1151-1159. https://www.scielo.org.mx/pdf/remexca/v4nspe6/v4spe6a7.pdf.
Millán-Soto, G.; Gutiérrez, A.; Esqueda, M.; Gardea, A.; Tiznado, M. and Orozco, J. A. 2016. Respiratory metabolism of Agave angustifolia Haw. Clonal lines at different temperatures. Plant Cell Tissue Organ Cult. 125(1):71-80. https://doi.org/10.1007/s11240-015-0930-0.
Morales-González, B. and Núñez-Palenius, H. G. 2015. Micropropagación de Agave tequilana Weber variedad Azul ‘El coronel’ en un sistema de inmersión temporal (SIT). Jóvenes en la Ciencia. 1(2):77 82. http://repositorio.ugto.mx/handle/20.500.12059/2307.
Murashige, T. and Skoog, F. 1962. A Revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum. 15(3):473-497. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.
Obledo-Vázquez, E. N.; Flores-Verduzco, N. y Cervantes-Martínez, J. 2004. Detección del efecto de un extracto vegetal antimicrobiano sobre plantas de agave (Agave tequilana Weber var. azul) Cultivadas in vitro utilizando fluorescencia inducida por láser (LIF). Revista Mexicana de Fitopatología. 22(3):328-332. https://www.redalyc.org/pdf/612/61222302.pdf.
Pancaningtyas, S. 2015. Study on the presence and influence of phenolic compounds in callogenesis and somatic embryo development of cocoa (Theobroma cacao L.). Pelita Perkebunan. 31(1):14-20.
Pérez-Pazos, J.; Rosero, A.; Cardinale, M. and Gámez, R. 2023. Development of control strategies for bacteria and fungi associated with a micropropagated new cultivar of orange-fleshed sweet potato (Ipomoea batatas cv. Agrosavia-Aurora). Hortic. Environ. Biotechnol. 64:859-875. https://doi.org/10.1007/s13580-023-00521-2.
Ríos-Ramírez, S. C.; Enríquez- Valle, J. R.; Rodríguez-Ortiz, G.; Ruíz-Luna, J. and Velasco-Velasco, V. A. 2018. In vitro formation of adventitious shoots on culinary tissue of physiologically contrasting Agave angustifolia plants. Emirates Journal of Food and Agriculture. 30(1):285-294.
Robert, M. L.; Herrera, J. L.; Chan, J. L. and Contreras, F. 1992. Micropropagation of Agave spp. In: Bajaj, Y. P. S. Ed. Biotechnology in agriculture and forestry. 19. Springer-Verlag. 306-329 pp. https://doi.org/10.1007/978-3-662-07770-2-19.
Sánchez, A.; Coronel-Lara, Z.; Gutiérrez, A.; Vargas, G.; Coronado, M. L. y Esqueda, M. 2020. Aclimatación y trasplante de vitro plantas de Agave angustifolia Haw. en condiciones silvestres. Revista Mexicana Ciencias Agrícolas. 11(7):1593-1605. https://doi.org/10.29312/remexca.v11i7.2403.
Sánchez-Cuevas, J. L. y Salaverria, J. 2004. Control de la oxidación y la contaminación en el cultivo in vitro de fresa (Fragaria x ananassa Duch. Revista Científica UDO Agrícola. 4(1):21- 26. https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=2221549.
SAS/ETS® 9.4. 2019. SAS Institute Inc. Cary, North Carolina, USA.
SIAP. 2019. Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera. Anuario Estadístico de la Producción Agrícola. https://nube.siap.gob.mx/cierreagricola.
Steiner, A. A. 1961. A universal method for preparing nutrient solutions of a certain desired composition. Plant Soil. 15:134-154.
Zeng, F.; Zhang, X.; Cheng, L.; Hu, L.; Zhu, L.; Cao, J. and Guo, X. 2007. A draft gene regulatory network for celular totipotency reprogramming during plant somatic embryogenesis. Genomics. 90:620-628.
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