https://doi.org/10.29312/remexca.v16i2.3502

elocation-id: e3502

Bobadilla-Meléndez, Zamora-Díaz, and Hernández-Anguiano: Fusarium graminearum quimiotipo Don en grano de cebada maltera cultivada en México

Journal Metadata

Journal Identifier: remexca [journal-id-type=publisher-id]

Journal Title Group

Journal Title (Full): Revista mexicana de ciencias agrícolas

Abbreviated Journal Title: Rev. Mex. Cienc. Agríc [abbrev-type=publisher]

ISSN: 2007-0934 [pub-type=ppub]

Publisher

Publisher’s Name: Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias

Article Metadata

Article Identifier: 10.29312/remexca.v16i2.3502 [pub-id-type=doi]

Article Grouping Data

Subject Group [subj-group-type=heading]

Subject Grouping Name: Nota de investigación

Title Group

Article Title: Fusarium graminearum quimiotipo Don en grano de cebada maltera cultivada en México

Contributor Group

Contributor [contrib-type=author]

Name of Person [name-style=western]

Surname: Bobadilla-Meléndez

Given (First) Names: Mirna

X (cross) Reference [ref-type=aff; rid=aff1]

Superscript: 1

Contributor [contrib-type=author]

Name of Person [name-style=western]

Surname: Zamora-Díaz

Given (First) Names: Mauro R.

X (cross) Reference [ref-type=aff; rid=aff2]

Superscript: 2

Contributor [contrib-type=author]

Name of Person [name-style=western]

Surname: Hernández-Anguiano

Given (First) Names: Ana María

X (cross) Reference [ref-type=aff; rid=aff3]

Superscript: 3

X (cross) Reference [ref-type=corresp; rid=c1]

Superscript: §

Affiliation [id=aff1]

Label (of an Equation, Figure, Reference, etc.): 1

Institution Name: in an Address: Campo Experimental Bajío-INIFAP. Carretera Celaya-San Miguel de Allende km 6.5, Colonia Roque, Celaya, Guanajuato, México. CP. 38110. (bobadilla.mirna@inifap.gob.mx). [content-type=original]

Institution Name: in an Address: Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias [content-type=normalized]

Institution Name: in an Address: Campo Experimental Bajío [content-type=orgdiv1]

Institution Name: in an Address: INIFAP [content-type=orgname]

Address Line

City: Celaya

State or Province: Guanajuato

Postal Code: 38110

Country: in an Address: Mexico [country=MX]

Email Address: bobadilla.mirna@inifap.gob.mx

Affiliation [id=aff2]

Label (of an Equation, Figure, Reference, etc.): 2

Institution Name: in an Address: Campo Experimental Valle de México-INIFAP. Carretera los Reyes-Texcoco km 13.5, Coatlinchán, Texcoco, Estado de México. CP. 56250. (zamora.mauro@inifap.gob.mx). [content-type=original]

Institution Name: in an Address: Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias [content-type=normalized]

Institution Name: in an Address: Campo Experimental Valle de México [content-type=orgdiv1]

Institution Name: in an Address: INIFAP [content-type=orgname]

Address Line

City: Texcoco

State or Province: Estado de México

Postal Code: 56250

Country: in an Address: Mexico [country=MX]

Email Address: zamora.mauro@inifap.gob.mx

Affiliation [id=aff3]

Label (of an Equation, Figure, Reference, etc.): 3

Institution Name: in an Address: Posgrado de Fitosanidad-Fitopatología-Colegio de Postgraduados. Carretera México-Texcoco km 36.5, Montecillo, Texcoco, Estado de México. CP. 56264. (ahernandez@colpos.mx). [content-type=original]

Institution Name: in an Address: Colegio de Postgraduados [content-type=normalized]

Institution Name: in an Address: Posgrado de Fitosanidad-Fitopatología [content-type=orgdiv1]

Institution Name: in an Address: Colegio de Postgraduados [content-type=orgname]

Address Line

City: Texcoco

State or Province: Estado de México

Postal Code: 56264

Country: in an Address: Mexico [country=MX]

Email Address: ahernandez@colpos.mx

Author Note Group

Correspondence Information: [§] Autora para correspondencia: ahernandez@colpos.mx [id=c1]

Publication Date [date-type=pub; publication-format=electronic]

Day: 16

Month: 04

Year: 2025

Publication Date [date-type=collection; publication-format=electronic]

Season: Feb-Mar

Year: 2025

Volume Number: 16

Issue Number: 2

Electronic Location Identifier: e3502

History: Document History

Date [date-type=received]

Day: 01

Month: 12

Year: 2024

Date [date-type=accepted]

Day: 01

Month: 04

Year: 2025

Permissions

License Information [license-type=open-access; xlink:href=https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/; xml:lang=es]

Este es un artículo publicado en acceso abierto bajo una licencia Creative Commons

Abstract

Title: Resumen

Las especies de Fusarium graminearun ocasionan la fusariosis de la espiga, enfermedad importante que afecta el rendimiento y la calidad sanitaria del grano en varias regiones productoras de cebada. Entre las medidas de control se encuentra el uso de variedades resistentes, por lo que este trabajo tuvo como objetivos aislar y caracterizar morfológica y molecularmente aislamientos de F. graminearum, procedentes de diferentes regiones productoras de cebada maltera en México e identificar aquellos aislamientos con la mayor capacidad de producir toxina Don in vitro para reconocer fuentes de resistencia genética. Se obtuvieron 39 aislamientos con características morfológicas de F. graminearun asociados a grano de cebada maltera, proveniente de municipios de Valles Altos, Bajío y Tamaulipas. La reacción por PCR con los iniciadores especie-específicos Fg16N-F/Fg16N-R para F. graminearum confirmó la identidad de 38 de los 39 aislamientos. Las secuencias del producto con Fg16N de 21 aislamientos se alinearon con la secuencia del cromosoma 1 de Fusarium graminearum, depositada en la base de datos del GenBank-NCBI. La reacción de PCR con los iniciadores ToxP1/ToxP2 indicaron que 17 de los 39 aislamientos corresponden al quimiotipo de F. graminearum productor de toxina Don. Cinco de 33 aislamientos, analizados por la prueba Ridascreen® Fast Don, registraron la mayor capacidad de producir Don in vitro (3.4 y 17 ppm), por lo que pueden ser considerados para identificar fuentes de resistencia a la fusariosis de la espiga en programas de mejoramiento genético de cebada maltera en el país.

Keyword Group [xml:lang=es]

Title: Palabras clave:

Keyword: Hordeum vulgare

Keyword: deoxynivalenol

Keyword: micotoxina.

Funding Group

Award Group [award-type=contract]

Funding Source: Consejo Nacional de Humanidades, Ciencias y Tecnologías

Funding Source: Centro Internacional de Maíz y Trigo

Award Identifier: 1136066

Counts

Figure Count [count=0]

Table Count [count=1]

Equation Count [count=0]

Reference Count [count=17]

Page Count [count=0]

Resumen

Las especies de Fusarium graminearun ocasionan la fusariosis de la espiga, enfermedad importante que afecta el rendimiento y la calidad sanitaria del grano en varias regiones productoras de cebada. Entre las medidas de control se encuentra el uso de variedades resistentes, por lo que este trabajo tuvo como objetivos aislar y caracterizar morfológica y molecularmente aislamientos de F. graminearum, procedentes de diferentes regiones productoras de cebada maltera en México e identificar aquellos aislamientos con la mayor capacidad de producir toxina Don in vitro para reconocer fuentes de resistencia genética. Se obtuvieron 39 aislamientos con características morfológicas de F. graminearun asociados a grano de cebada maltera, proveniente de municipios de Valles Altos, Bajío y Tamaulipas. La reacción por PCR con los iniciadores especie-específicos Fg16N-F/Fg16N-R para F. graminearum confirmó la identidad de 38 de los 39 aislamientos. Las secuencias del producto con Fg16N de 21 aislamientos se alinearon con la secuencia del cromosoma 1 de Fusarium graminearum, depositada en la base de datos del GenBank-NCBI. La reacción de PCR con los iniciadores ToxP1/ToxP2 indicaron que 17 de los 39 aislamientos corresponden al quimiotipo de F. graminearum productor de toxina Don. Cinco de 33 aislamientos, analizados por la prueba Ridascreen® Fast Don, registraron la mayor capacidad de producir Don in vitro (3.4 y 17 ppm), por lo que pueden ser considerados para identificar fuentes de resistencia a la fusariosis de la espiga en programas de mejoramiento genético de cebada maltera en el país.

Palabras clave:

Hordeum vulgare, deoxynivalenol, micotoxina.

La fusariosis de la espiga es una enfermedad de gran importancia económica en cereales de grano pequeño como la cebada (Hordeum vulgare L.). Esta enfermedad es ocasionada por un complejo de especies de Fusarium entre ellas Fusarium graminearum Schwabe (Teleomorfo Gibberella zeae (Schweinitz) (Mert-Türk et al., 2014). Gilchrist-Saavedra (2000) reportó la presencia de la fusariosis de la espiga en México, en regiones de Valles Altos y del Bajío. Estas regiones comprenden los estados de Hidalgo, Estado de México, Puebla y Tlaxcala y los de Guanajuato, Jalisco y Michoacán, donde se cultiva cebada maltera bajo condiciones de temporal y riego, respectivamente.

F. graminearum es un hongo que se caracteriza por producir toxinas que dañan la salud de animales y personas que consumen granos o productos de cebada contaminados (Bezerra et al., 2014; FDA, 2010), entre las que destacan las del grupo de los tricotecenos como el deoxinivalenol (Don) y el nivalenol (NIV) (Mert-Türk et al., 2014). Estas toxinas se consideran como un factor de virulencia asociado con la capacidad del hongo de producir aislamientos con diferente grado de patogenicidad (Mesterházy, 2002; Malihipour et al., 2012).

Entre las estrategias recomendadas de control de la fusariosis de la espiga se encontró el uso de variedades resistentes para disminuir la incidencia del hongo en el grano (McMullen et al., 2012). Por lo anterior, es necesario contar con una colección de cepas de F. graminearum, aisladas de las variedades y líneas experimentales de cebada maltera, cultivadas en las diferentes regiones geográficas de México, para identificar fuentes de resistencia que puedan ser utilizadas en cruzamientos realizados por los programas de mejoramiento genético de cebada de instituciones de investigación nacional e internacional para controlar la enfermedad (Bobadilla et al., 2019).

Este trabajo tuvo como objetivo principal aislar y caracterizar morfológica y molecularmente aislamientos de F. graminearum procedentes de diferentes regiones productoras de cebada maltera en México e identificar aquellas cepas con la mayor capacidad de producir toxina Don in vitro, para estudios posteriores de búsqueda de fuentes de resistencia genética a la fusariosis de la espiga.

Durante los ciclos 2021, 2022 y 2023 de producción de cebada maltera, se colectaron 257 muestras de espigas con y sin síntomas de manchado de grano de las variedades Adabella, Alina, Armida, Blanca, Esperanza y Esmeralda) y de 131 líneas experimentales del programa de Cebada del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP). En la región de Valles Altos se colectaron 68 muestras (19 en Hidalgo, 16 en Tlaxcala, 17 en el Estado de México y 16 en Puebla); 19 en Baja California; 156 en el Bajío (136 en Guanajuato, 12 en Jalisco y 8 en Michoacán), y 14 en Tamaulipas. De cada muestra se tomaron al azar 240 semillas para su análisis por la prueba de papel secante y congelación (Warham et al., 1997).

Previo a la prueba, la semilla se desinfestó con hipoclorito de sodio (ReasolMR) al 5% por 1 min en agitación mecánica, y se enjuagó dos veces con agua destilada estéril. Los aislamientos con características morfológicas de F. graminearum (Leslie y Summerell, 2006) se purificaron por cultivo monospórico en agua-agar (BD Bioxon®), se cultivaron en agua-agar-hoja de clavel y papa-dextroxa agar (BD Bioxon®) y se almacenaron en aceite mineral (Mier et al., 2002) y papel filtro Whatman #1 (Fong et al., 2000).

De cada aislamiento se extrajo ADN a partir de micelio liofilizado con el método de bromuro de cetiltrimetilamonio (CTAB) (Joint Research Centre of the European Commision, 2007). La calidad y cantidad del ADN extraído se verificó en un NanoDrop ND-1000. Para confirmar la identidad y determinar el quimio tipo mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), se establecieron reacciones con los iniciadores especie-específicos Fg16N-Forward ACAGATGACAAGATTCAGGCACA y Fg16N-reverse TTCTTTGACATCTGTTCAACCCA (Nicholson et al., 1998) y con los iniciadores, ToxP1 5′GCCGTGGGGRTAAAAGTCAAA3′ y ToxP2 5′TGACAAGTCCGGTCGCACTAGCA3 los cuales amplifican una región intergénica entre los genes Tri5 y Tri6 relacionados con la síntesis de las toxinas Don y Niv (Li et al., 2005).

Cada reacción fue de un volumen final de 12 µl con la misma formulación, excepto para la alineación. Desnaturalización inicial 95 °C, 10 min; 40 ciclos: desnaturalización 95 °C, 30 s; alineación 60 °C, 60 s (Fg16N) o 65 °C, 60 s (ToxP); extensión 72 °C, 72 s; extensión final 72 °C, 10 min. Las reacciones se establecieron en un termociclador Eppendorf Mastercycler Gradiente Thermal Cycler, los productos se analizaron por electroforesis en agarosa al 2% y se visualizaron en un fotodocumentador UVP PhotoDoc-ItTM, Fisher Scientific. Como referencia se incluyó en el gel el marcador ØX174 (PhiX174) /HaeIII (Fermentas y BioLabs, respectivamente).

El producto de PCR con Fg16N de 21 cepas se envió a secuenciar a Macrogen CIA (http://dna.macrogen), Korea y las secuencias se compararon con Ncbi Blast (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) para verificar su relación con Fusarium graminearum. La capacidad de los aislamientos para producir Don in vitro se evaluó mediante la prueba de Ridascreen® Fast Don (inmunoensayo enzimático (Elisa)) utilizando muestras de harina (2 g) obtenidas de grano de arroz (Sos® Arroz Sushi, super extra) colonizado con el hongo, y con placas, reactivos y protocolo de Ridascreen® Fast Don.

Los datos se analizaron con Statistical Analysis Software (SAS) Versión 9.4, para Windows, bajo un diseño completamente al azar, y la comparación de medias por el método de Tukey (α= 0.05). Del total de semilla (61 680 semillas) analizada de Valles Altos, Bajío y Tamaulipas, se obtuvieron 39 aislamientos con características morfológicas de F. graminearum (Leslie y Summerell, 2006) (Cuadro 1).

Cuadro 1

Cuadro 1. Identificación molecular de especie y quimiotipo y producción de toxina Don in vitro.

Localidad Clave aislamiento PCR Especie alineada Don (ppm)¥
Fg16N ToxP
Almoloya, Hidalgo AL5R10 + - 0.1c*
AL6R32 + - F. graminearum § 0c
AL9R32 + - 0c
Cuautepec, Hidalgo HGO1 + + F. graminearum nd
HGO2 + + F. graminearum nd
Nanacamilpa, Tlaxcala NA0R20 + - 0c
NA5R20 + + F. graminearum 1.6c
NA8R20 + + 2.6c
NA9R10 + + 2.9c
NA11R30 + + 0.1c
NA16R10 + - 0c
NA16R20 + - F. graminearum 0.1c
Santa Lucía, Edo. de México SL1 + + nd
SL3R21 + + 2.3c
SL10R10 + + F. graminearum 3.4bc
SL3R22 + + 1c
SL3R23 + + F. graminearum 9.2b
SL3R24 + + F. graminearum 5bc
SL6R10 + - F. graminearum 0c
SL8R10 + - F. graminearum 0c
SL4R10 + - 0c
SL5R30 + - F. graminearum 0.1c
Cuyuaco, Puebla CU0R10 + - F. graminearum 0c
CU1R30 + + F. graminearum 17.0a
CU6R30 + + F. graminearum 3.6bc
CU13R10 + - 0.1c
CU9R11E + - F. graminearum 0c
CU8R36E + - 0c
Celaya, Guanajuato CEN1 + - 0c
CEN2 + - F. graminearum 0c
CEN3 + - 0c
CEN4 + - 0.1c
CEN8 + - F. graminearum 0c
CEN9 + - 0c
CEE1 + - F. graminearum 0.1c
CEFS31 + - 0.1c
Tepatitlán, Jalisco JA1 - + F. graminearum nd
Río Bravo, Tamaulipas TAMPS1 + + F. graminearum nd
TAMPS2 + + F. graminearum nd

[i] +/-= amplificación/no amplificación de banda; nd= no se determinó; *= medias por columna con la misma letra no son estadísticamente diferentes (Tukey α= 0.05); ¥límite detección= 0.2 ppm kg; límite cuantificación= 0.36 ppm kg para avena; §= Fusarium graminearum chromosome 1.

De la semilla de Baja California y Michoacán no se aisló el hongo. Con excepción de JA1, todos los aislamientos amplificaron la banda esperada de 280 pares de bases (pb) con Fg16N-F/Fg16N-R (Nicholson et al., 1998). Las secuencias (aproximadamente 250 pb) del producto con Fg16N de 21 cepas (tomadas al azar por localidad), incluyendo la de JA1, se alinearon con la secuencia del cromosoma 1 de F. graminearum, número de accesión HG970332, depositada en la base de datos del GenBank-NCBI (Cuadro 1). Los índices de similitud estuvieron entre 99 y 96%.

En la reacción con ToxP1/ToxP2, 17 aislamientos de Valles Altos (14), Jalisco (1) y Tamaulipas (2) amplificaron una banda de 300 pb (Cuadro 1). Es importante indicar que estos iniciadores detectan simultáneamente dos fragmentos: uno de 300 pb para el quimiotipo de F. graminearum productor de Don y otro de 360 pb para el quimiotipo de F. graminearum productor de NIV (Li et al., 2005). Ningún aislamiento de Guanajuato amplificó con estos iniciadores. Con excepción de NA11R30, 10 de los aislamientos que amplificaron con ToxP1/ToxP2 registraron producción de Don in vitro, observándose diferencias (Tukey α= 0.05) en los niveles de producción.

Posiblemente los aislamientos que amplificaron con Fg16N, pero que no amplificaron con ToxP ni registraron producción de Don, correspondan a otros quimiotipos de F. graminearum (Walker et al., 2001).

En general, los resultados indican que en las regiones productoras de cebada maltera de Valles Altos, Bajío, Baja California y Tamaulipas la incidencia de F. graminearum fue baja (menor a 1%), y que los 39 aislamientos obtenidos presentan variación genética (Tukey α= 0.05) no solamente entre los aislamientos provenientes de diferentes estados, sino entre los aislados en colectas de un mismo municipio (Cuadro 1). La investigación de Cerón-Bustamante et al. (2018) no detectó a F. graminearum entre las especies de Fusarium asociadas a espigas de trigo con fusariosis de la espiga, colectadas en las regiones productoras de trigo de Valles Altos, Bajío y Oaxaca.

Conclusiones

Se obtuvieron 39 aislamientos con características morfológicas de F. graminearun asociados a grano de cebada maltera cosechado en municipios de Valles Altos, Bajío y Tamaulipas. En 38 aislamientos se confirmó su identidad mediante PCR con los iniciadores especie-específicos Fg16N-F/Fg16N-R. Las secuencias del producto con Fg16N de 21 aislamientos, incluida la de JA1 que no amplificó, se alinearon con la secuencia del cromosoma 1 de Fusarium graminearum, depositada en la base de datos del GenBank-NCBI.

La reacción de PCR con los iniciadores ToxP1/ToxP2 indicó que 17 de los 39 aislamientos corresponden al quimiotipo de F. graminearum productor de toxina Don. Los aislamientos SL10R10, SL3R23, SL3R24, CU1R30 y CU6R30, analizados por la prueba Ridascreen® Fast Don, tuvieron alta capacidad de producir Don in vitro (entre 3.4 y 17 ppm), por lo que pueden ser considerados para identificar fuentes de resistencia a la fusariosis de la espiga en programas de mejoramiento de cebada maltera en el país.

Agradecimientos

Al Consejo Nacional de Humanidades, Ciencias y Tecnologías (CONAHCYT) por la beca 1136066 otorgada a la primera autora para estudios de doctorado. Al Dr. Pawan K. Singh del Centro Internacional de Maíz y Trigo (CIMMYT) por su apoyo para realizar los análisis en su laboratorio.

Bibliografía

1 

Bezerra, R. M. E.; Oliveira, F. F. Ch.; Feitosa, M. F. E.; Florindo, G. M. I. and Rondina D. 2014. Mycotoxins and their effects on human and animal health. Food Control. 36(1):159-165. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2013.08.021.

2 

Bobadilla, M. M.; Hernández-Anguiano, A. M.; Zamora-Díaz, M. R. y Vargas-Hernández, M. 2019. Evaluación de líneas de cebada maltera a fusariosis de la espiga y acumulación de deoxinivalenol. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas. 10(3):485-498. https://doi.org/10.29312/remexca.v10i3.916.

3 

Cerón-Bustamante, M.; Ward, T. J.; Kelly, A.; Vaughan, M. M.; McCormick, S. P.; Cowger, C.; Leyva-Mir, S. G.; Villaseñor-Mir, H. E.; Ayala-Escobar, V. and Nava-Díaz, C. 2018. Regional differences in the composition of fusarium head blight pathogens and mycotoxins associated with wheat in Mexico. International Journal of Food Microbiology. 273:11-19 https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2018.03.003.

4 

FDA. 2010. Food and Drug Administration. Guidance for industry and FDA: advisory levels for deoxynivalenol (DON) in finished wheat products for human consumption and grains and grain by-products used for animal feed. https://www.fda.gov/Food/GuidanceRegulation/ucm120184.htm.

5 

Fong, Y. K.; Anuar, S.; Lim, H. P.; Tham, F. Y. and Sanderson, F. R. 2000. A modified filter paper technique for long-term preservation of some fungal cultures. Mycologist. 14(3):127-130. https://doi.org/10.1016/S0269-915X(00)80090-7.

6 

Gilchrist-Saavedra, L. I. 2000. Problemas fitosanitarios de los cereales de grano pequeño en los Valles Altos de México. Serie de Conferencias Magistrales. In: XXVII Congreso Nacional de la Sociedad Mexicana de Fitopatología, AC. Revista Mexicana de Fitopatología. 18(2):132-137. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=61218211.

7 

Joint Research Centre of the European Commission. 2007. Maize seeds sampling and DNA extraction. Report on the validation of a DNA extraction method from maize seeds and grains. 1-10 pp.

8 

Leslie, J. F. and Summerell, B. A. 2006. The Fusarium laboratory manual. First edition. Ed. Blackwell Publishing. USA. 387 p.

9 

Li, H. P.; Wu, A. B.; Zhao, Ch. S.; Scholten, O.; Löffler, H. and Liao, Y. C. 2005. Development of a generic PCR detection of deoxynivalenol- and nivalenol-chemotypes of Fusarium graminearum. FEMS Microbiology Letters. 243(2):505-511. https://doi.org/10.1016/j.femsle.2005.01.015.

10 

Malihipour, A.; Gilbert, J.; Piercey-Normore, M. and Cloutier, S. 2012. Molecular phylogenetic analysis, trichothecene chemotype patterns, and variation in aggressiveness of Fusarium isolates causing head blight in wheat. Plant Disease. 96(7):1016-1025. https://doi.org/10.1094/PDIS-10-11-0866-RE.

11 

Mert-Türk, F.; Gencer, R. and Kahriman, F. 2014. Chemotyping of the Fusarium graminearum isolates and variation in aggressiveness against wheat heads. The Journal of Animal & Plant Sciences. 24(6):1858-1862. http://www.thejaps.org.pk/docs/v-24-6/40.pdf. ISSN: 1018-7081.

12 

Mesterházy, A. 2002. Role of deoxynivalenol in aggressiveness of Fusarium graminearum and F. culmorum and in resistance to Fusarium head blight. European Journal of Plant Pathology. 108(7):675-684. https://doi.org/10.1023/A:1020631114063.

13 

McMullen, M.; Bergstrom, G.; De Wolf, E.; Dill-Macky, R.; Hershman, D.; Shaner, G. and Sanford, D. V. 2012. A unified effort to fight an enemy of wheat and barley: fusarium head blight. Plant Disease. 96(12):1712-1721. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-12-0291-FE.

14 

Mier, T.; Toriello, C. y Ulloa, M. 2002. Hongos microscópicos saprobios y parásitos: métodos de laboratorio. Universidad Autónoma Metropolitana Xochimilco (UAM)-X. México, DF. 54-57 pp. ISBN 970654609X.

15 

Nicholson, P.; Simpson, D. R.; Weston, G.; Rezanoor, H. N.; Lees, A. K.; Parry, D. W. and Joyce, D. 1998. Detection and quantification of Fusarium culmorum and Fusarium graminearum in cereals using PCR assays. Physiological and Molecular Plant Pathology. 53(1):17-37. https://doi.org/10.1006/pmpp.1998.0170.

16 

Warham, E. J.; Butler, L. D. y Sutton, R. C. 1997. Ensayos para la semilla de maíz y de trigo. Manual de laboratorio. Centro Internacional de Mejoramiento de Maíz y Trigo (CIMMYT). El Batán, Texcoco, Estado de México. ISBN: 968-6923-71-3. 84 p.

17 

Walker, L. S.; Leath, S.; Hagler, Jr. W. M. and Murphy, J. P. 2001. Variation among isolates of Fusarium graminearum associated with Fusarium head blight in North Carolina. Plant Disease. 85(4):404-410. https://doi.org/10.1094/PDIS.2001.85.4.404.